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Bcl-2

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Bcl-2 est le prototype d'une famille de gènes qui peuvent être soit pro-apoptotiques – entre autres Bax, Bak, Bok, Bad, Bid et Bim – ou anti-apoptotiques – parmi lesquels Bcl-2, Bcl-xL, Bcl-w, Nr13. La protéine Bcl-2 est une protéine de 239 acides aminés dont le gène est situé sur le chromosome 18 humain au locus q21.33. Elle est constituée de quatre domaines d’homologie qui sont aussi présents chez d’autres protéines de la même famille. Ce sont ces domaines, ainsi que son domaine trans-membranaire qui lui permettent d’avoir une action sur l’apoptose.

Introduction

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L'induction de la mort cellulaire est l'un des mécanismes fondamentaux régulant l'homéostasie tissulaire et contrebalançant la prolifération cellulaire. Elle joue un rôle essentiel dans le modelage des tissus au cours du développement — comme lors de la formation des doigts —, dans l'élimination des cellules immunitaires auto-réactives et dans la suppression des cellules irrémédiablement endommagées. Une dérégulation de ce processus peut conduire à des pathologies associées à une augmentation anormale de la masse cellulaire ou, à l'inverse, à une perte tissulaire[1].

La forme la plus connue de mort cellulaire régulée est l'apoptose, qui peut être déclenchée soit par des signaux extracellulaires (voie extrinsèque), soit par des signaux internes (voie intrinsèque). Ces deux voies peuvent interagir entre elles et toutes deux nécessitent l'activation de caspases pour conduire à la mort cellulaire. La voie intrinsèque est principalement contrôlée par la famille de protéines BCL2[2]. Ces protéines, dont certaines favorisent et d'autres inhibent l'apoptose, interagissent entre elles pour réguler la libération du cytochrome c depuis les mitochondries vers le cytosol. Le cytochrome c cytosolique déclenche ensuite la formation de l'apoptosome, l'activation de la caspase-9 et de la cascade des caspases, aboutissant à la mort cellulaire[3].

Chez l'homme, la famille BCL2 compte environ 20 protéines caractérisées par des domaines structuraux conservés appelés domaines d'homologie BCL2 (BH)[4]. On les classe en trois groupes :

  • les protéines anti-apoptotiques à domaines multiples (BCL2, BCL-XL, BCL-w, MCL1, BCL2A1, BCLB),
  • les protéines pro-apoptotiques à domaines multiples (BAK, BAX et BOK),
  • les protéines pro-apoptotiques à domaine BH3 unique (BID, BIM, BAD, BIK, NOXA, PUMA, BMF et HRK).

En réponse à un stress cellulaire, les protéines BH3-only sont activées et bloquent les protéines anti-apoptotiques tout en activant les protéines pro-apoptotiques à domaines multiples. Ces domaines BH sont très conservés au cours de l'évolution : les protéines BCL2 sont ainsi présentes non seulement chez les mammifères, mais aussi chez d'autres métazoaires et dans certains virus[5]. Chez ces derniers, elles favorisent la survie des cellules infectées et protègent contre les défenses immunitaires innées[6], illustrant ainsi les conséquences d'une dérégulation de cette famille protéique.

Chez l'homme, cette dérégulation est impliquée dans de nombreuses maladies, dont le cancer, les maladies neurodégénératives et les maladies auto-immunes. Dans le cancer en particulier, la plupart des tumeurs dépendent d'une ou plusieurs protéines anti-apoptotiques BCL2, qui représentent donc des cibles thérapeutiques privilégiées.

Bcl-2 doit son nom à l'anglais B-cell lymphoma 2 (lymphome à cellules B). La protéine fondatrice et éponyme BCL2, à fonction anti-apoptotique, a été découverte en 1984 comme étant le gène impliqué dans la translocation chromosomique t(14;18)(q32.3;q21.3) présente dans 85 % des lymphomes folliculaires[7]. Cette translocation juxtapose le gène BCL2 sur le chromosome 18 à la région de la chaîne lourde des immunoglobulines sur le chromosome 14, ce qui entraîne une surexpression de BCL2. Outre le lymphome folliculaire, cette translocation chromosomique a également été observée dans le lymphome diffus à grandes cellules B et la leucémie lymphoïde chronique[8].

Dans la continuité de sa description initiale, BCL2 a été identifiée comme un inhibiteur de l'apoptose, représentant ainsi le premier exemple d'un oncogène contribuant au cancer en bloquant la mort cellulaire plutôt qu'en favorisant la prolifération[9]. En 1993, BAX a été découverte comme homologue de BCL2 et, sur la base de la liaison de BAX à BCL2, un premier modèle d'hétérodimérisation entre protéines BCL2 anti- et pro-apoptotiques a été proposé[10]. La découverte des premières protéines BH3-only, BIK] et BID, a permis d'identifier le domaine BH3 comme principal partenaire de liaison[11],[12]. Une compréhension plus approfondie de la régulation de l'apoptose a été apportée en 1997 par l'identification de la libération du cytochrome c comme principal événement apoptotique bloqué par BCL2[13],[14]. Au cours des dernières décennies, les principes fondamentaux de la régulation de l'apoptose par la famille des protéines BCL2 ont été caractérisés, avec plusieurs modèles cherchant à expliquer les interactions complexes au sein de cette famille protéique.

Le réseau de protéines BCL2 régule l'apoptose

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La famille BCL-2 et les grandes étapes du développement des inhibiteurs du BCL-2

La protéine Bcl-2 est capable d'inhiber l'apoptose. Localisée dans la membrane mitochondriale, elle empêche l'homodimérisation de Bax, de Bak et de certaines autres protéines pro-apoptotiques multi-domaines de la même famille. L'homodimère de Bax se fixe à la membrane externe mitochondriale. Cette fixation entraîne une perforation de la membrane mitochondriale et un relargage de cytochrome c dans le cytosol. Ceci entraîne une modification du potentiel membranaire mitochondrial ainsi qu'une perturbation de la chaîne respiratoire, mais ce n'est pas la cause de l'apoptose. En fait, c’est la présence de cytochrome c dans le cytosol qui cause cette dernière. Effectivement, en se liant à Apaf-1 et à la caspase 9, le cytochrome c crée un complexe nommé apoptosome. C’est ce complexe qui permet l'activation de caspases effectrices : caspase 3 et 7. C’est de cette façon que la chaîne des caspases est activée et entraîne la mort cellulaire. (Voir liens vers images pour des schémas)

Bcl-2 peut être inhibée par une protéine comme Bad. Bad est une protéine de la famille des Bcl-2 de type BH3 seulement, ce qui signifie qu'elle ne possède qu'un seul domaine d'homologie avec les autres protéines de cette famille, en l'occurrence, le domaine BH3. En conditions pro-apoptotiques, elle forme un lien avec Bcl-2 et l'empêche de se lier aux protéines pro-apoptotiques multi-domaines telles Bax et Bak. Dans ces conditions, Bcl-2 n'empêche plus l'homodimérisation de Bax ou de Bak. Ces dernières peuvent donc s'homodimériser pour former des pores. Le cytochrome C peut donc sortir de la mitochondrie et activer l'apoptose.

De plus, selon la voie qui active la cellule vers la mort cellulaire programmée, il est possible que l’inhibition par Bcl-2 soit contournée. Ainsi, si l’apoptose est activée par liaison du ligand de Fas avec son récepteur, il se produit une accumulation de caspase-3 dans le cytosol. Dans ces conditions, la caspase-3 est capable de cliver Bcl-2 dans sa boucle de l’extrémité NH2. Ce clivage se produit juste après l’acide aspartique en position 34 dans la séquence suivante ; Asp31-Ala32-Gly33-Asp34.

Ce clivage a pour effet, non seulement d’altérer les fonctions anti-apoptotiques de Bcl-2, mais aussi de lui conférer un pouvoir pro-apoptotique. Dans ces conditions, le processus de mort cellulaire est accéléré par la présence de Bcl-2 clivé.

Rôle des protéines BCL2 anti-apoptotiques dans le maintien de l'intégrité mitochondriale

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La libération du cytochrome c depuis les mitochondries vers le cytosol est considérée comme un point de non-retour dans la mort cellulaire. Les protéines BCL2 jouent un rôle central dans la régulation de ce processus en contrôlant la perméabilisation de la membrane mitochondriale externe), qui conduit à cette libération. Six protéines BCL2 anti-apoptotiques sont essentielles pour bloquer la membrane mitochondriale externe : BCL2, BCL-XL (BCL2L1), Bfl-1 (BCL2A1), BCL-w (BCL2L2), BCL-B (BCL2L10) et MCL1[15],[16],[17],[18],[19].Ces protéines partagent une structure similaire en hélices α et contiennent quatre domaines BH[20],[21]. Elles possèdent notamment un sillon hydrophobe de surface qui leur permet de se lier aux domaines BH3 des membres pro-apoptotiques de la famille, neutralisant ainsi leur activité.

Ces protéines anti-apoptotiques s'ancrent également dans la membrane mitochondriale externe via un domaine transmembranaire, ce qui leur permet d'interagir directement avec les protéines pro-apoptotiques présentes à la fois dans cette membrane et dans le cytoplasme[22]. Cette localisation mitochondriale est indispensable à leur fonction protectrice — même BCL2A1, qui ne possède pas de domaine transmembranaire bien défini, est localisée au niveau des mitochondries dans les cellules saines[23].

Régulation de la signalisation calcique au niveau du réticulum endoplasmique

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a Dans les cellules saines non soumises à un stress, plusieurs mécanismes impliquant les fonctions canoniques et non canoniques des membres de la famille BCL2 empêchent la MOMP et la libération du cytochrome c depuis les mitochondries, notamment la rétrotranslocation de BAX/BAK, la disponibilité limitée des protéines BH3-only au niveau des membranes mitochondriales, et la prévention de la surcharge mitochondriale en Ca²⁺.
b En situation de stress cellulaire, les protéines BH3-only deviennent disponibles au niveau des mitochondries et facilitent l'oligomérisation de BAX/BAK, conduisant à la MOMP. Ce processus est également favorisé par une signalisation calcique accrue, notamment les transferts de Ca²⁺ depuis les réserves du réticulum endoplasmique vers les mitochondries.

En plus de leur rôle au niveau des mitochondries, les protéines BCL2 anti-apoptotiques sont également présentes dans d'autres compartiments cellulaires, notamment le réticulum endoplasmique , principal réservoir de calcium (Ca²⁺) de la cellule. Les niveaux de Ca²⁺ stockés dans le réticulum endoplasmique influencent de nombreux processus de mort cellulaire, dont l'apoptose[24],[25].

Le réticulum endoplasmique et les mitochondries sont étroitement connectés et échangent en permanence des lipides, des espèces réactives de l'oxygène et du Ca²⁺. Ces échanges calciques sont essentiels à la survie cellulaire, mais une surcharge en Ca²⁺ dans les mitochondries peut déclencher la mort cellulaire[25],[26],[27]. Plusieurs protéines BCL2 anti-apoptotiques protègent les cellules contre l'apoptose en agissant directement sur le réticulum endoplasmique. BCL2 peut ainsi réduire les niveaux de Ca²⁺ stockés dans le réticulum endoplasmique, et bloquer la libération de Ca²⁺ via les récepteurs à l'inositol trisphosphate[28],[29].D'autres membres de la famille, comme BCL-XL,[62-65] MCL1,[66] BCL-B et BCL-w, exercent également leur effet protecteur en modulant les échanges calciques au niveau du réticulum endoplasmique[30]. Par ailleurs, BCL2 et BCL-XL peuvent se lier aux récepteurs à la ryanodine, une autre classe de canaux calciques présents dans les cellules excitables, et inhiber leur activité[31]. Enfin, l'importance de chaque protéine BCL2 anti-apoptotique dépend non seulement de sa fonction moléculaire, mais aussi de son profil d'expression : certaines comme BCL-w et BCL2A1 ne sont présentes que dans certains tissus, tandis que d'autres comme MCL1 sont exprimées dans la quasi-totalité des cellules. Des différences existent également entre espèces : BCL2A1 est ainsi limitée au système hématopoïétique chez la souris, alors que son expression est plus large chez l'homme[32].

Les protéines BH3-uniques (only), sentinelles du stress cellulaire

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Les membres pro-apoptotiques de la famille BCL2 se divisent en deux groupes principaux [33],[34]:

  • les protéines à domaines multiples BAX, BAK et BOK,
  • les protéines BH3-only, notamment BIM, PUMA, BID, NOXA, BAD, BMF, BIK, HRK et certains membres moins bien caractérisés comme les protéines de la famille BNIP.

Contrairement aux protéines à domaines multiples, les protéines BH3-uniques sont dépourvues de structure définie et ne partagent entre elles que le domaine BH3, qui se replie en hélice alpha uniquement lors de l'interaction avec une protéine partenaire[35]. BID constitue une exception : comme les protéines à domaines multiples, elle possède une structure centrale et doit être clivée pour exposer son domaine BH3[36]. Ce clivage, réalisé par la caspase-8 dans la voie extrinsèque, fait de BID un lien important entre les voies apoptotiques extrinsèque et intrinsèque[37].

Via leur domaine BH3, ces protéines se lient dans le sillon hydrophobe des protéines BCL2 anti-apoptotiques, bloquant ainsi la séquestration de BAX et BAK[38]. Selon les propriétés de leur domaine BH3, certaines comme BIM, BID et PUMA peuvent se lier à toutes les protéines anti-apoptotiques, tandis que d'autres n'interagissent qu'avec des partenaires sélectifs[39]. On distingue deux catégories fonctionnelles [40],[41],[42]:

  • les activateurs directs (BIM, tBID et PUMA), qui se lient directement à BAX et BAK pour déclencher la formation de pores,
  • les sensibilisateurs, qui neutralisent les protéines anti-apoptotiques pour libérer BAX et BAK.

L'activité des protéines BH3-uniques est finement régulée par plusieurs mécanismes : régulation transcriptionnelle, stabilité protéique, phosphorylation et accessibilité aux mitochondries.

Perturbations mitochondriales médiées par BAX et BAK

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BAX et BAK partagent une structure similaire à celle des protéines BCL2 anti-apoptotiques, avec un domaine transmembranaire C-terminal et quatre domaines BH[43]. Leur principale fonction est de s'oligomériser au sein de la membrane mitochondriale externe pour y former des pores, entraînant la libération du cytochrome c dans le cytosol[44]. Les protéines BCL2 anti-apoptotiques peuvent bloquer ce processus en séquestrant BAX et BAK via leur sillon hydrophobe[45]. Le rôle de BOK est moins bien défini, certaines études suggérant qu'il agit principalement au niveau de l'appareil de Golgi et du réticulum endoplasmique.

Dans les cellules saines, BAX est principalement présente dans le cytosol et y retourne en permanence depuis la membrane mitochondriale externe, évitant ainsi son accumulation toxique[46]. BAK, en revanche, est déjà associée aux mitochondries au repos[47]. En réponse à un stress cellulaire, les deux protéines subissent des changements de conformation déclenchés par les protéines BH3-uniques, s'accumulent aux mitochondries et forment d'abord des dimères, puis des complexes d'ordre supérieur à l'interface lipidique de la membrane mitochondriale externe[48]. Les homodimères sont nettement plus fréquents que les hétérodimères BAX-BAK[49].

La structure exacte des pores formés dans la membrane mitochondriale externe a longtemps été débattue. Les données récentes soutiennent un modèle de pore toroïdal, dans lequel les deux feuillets de la membrane fusionnent pour former une surface continue de lipides et de protéines permettant la libération des protéines de l'espace intermembranaire[50]. Les oligomères de BAX s'organisent en anneaux, en arcs ou en lignes[51]. Au-delà de leur rôle dans la mort cellulaire, BAX et BAK participent également à la régulation de la dynamique mitochondriale en contrôlant les processus de fusion et de fission[52]. BAX et BAK agissent aussi au niveau du réticulum endoplasmique, où ils contribuent au maintien des réserves de Ca²⁺. Pendant l'apoptose, BAX est recruté aux sites de contact réticulum endoplasmique-mitochondries, qui servent de plateformes pour coordonner les flux calciques et la libération du cytochrome c[53].

BOK, quant à lui, est étroitement associé aux récepteurs inositols triphosphates du réticulum endoplasmique, ce qui le stabilise et limite son activité pro-apoptotique. Il favorise également les échanges calciques entre le réticulum endoplasmique et les mitochondries, contribuant ainsi à son effet pro-apoptotique[54],[55].

Cible thérapeutique

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Plusieurs molécules inhibitrices du Bcl-2 ont été développées, avec une action pro-apoptose. Elles sont en test dans le traitement de certaines leucémies. Le navitoclax et le venetoclax sont en cours d'essai.

Membres de la famille BCL-2

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Membres de la famille BCL-2 [21]
Sous-famille Activité Statut domaine BH Nom
Anti-apoptique Anti-apoptique Présence du domaine BH4 BCL-2

BCL-XL

BCL-W

BCL-B (BCL2L10)

MCL-1L

Absence du domaine BH4 MCL-1

BFL-1/A1

BCL2L12

Protéines exécutrices formant des pores Pro-apoptique Multi-domaines BAX

BAK

BOK

BH3-only (unique) Pro-apoptique Activateur – se lie aux protéines Bcl-2 multi-domaines pro-apoptotiques et anti-apoptotiques[38] BIM

BID

Puma

Mule

Sensibilisateur – déplace les protéines BH3-only activatrices des protéines anti-apoptotiques afin de favoriser l'apoptose [38] BAD

Noxa

BIK./BLK

BMF

HRK/DP5

Beclin-1

Potentiellement pro-apoptique BCL-Rambo (BCL2L13)

BCL-G (BCL2L14)

MCL-1S

MCL-1ES

Notes et références

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  1. (en) Douglas R. Green, « A Matter of Life and Death », Cold Spring Harbor Perspectives in Biology, vol. 14, no 1,‎ , a041004 (ISSN 1943-0264, PMID 34983779, PMCID 8725630, DOI 10.1101/cshperspect.a041004, lire en ligne, consulté le )
  2. (en) Rumani Singh, Anthony Letai et Kristopher Sarosiek, « Regulation of apoptosis in health and disease: the balancing act of BCL-2 family proteins », Nature Reviews Molecular Cell Biology, vol. 20, no 3,‎ , p. 175–193 (ISSN 1471-0080, PMID 30655609, PMCID 7325303, DOI 10.1038/s41580-018-0089-8, lire en ligne, consulté le )
  3. (en) Kim Newton, Andreas Strasser, Nobuhiko Kayagaki et Vishva M. Dixit, « Cell death », Cell, vol. 187, no 2,‎ , p. 235–256 (DOI 10.1016/j.cell.2023.11.044, lire en ligne, consulté le )
  4. (en) Valentina Sora et Elena Papaleo, « Structural Details of BH3 Motifs and BH3-Mediated Interactions: an Updated Perspective », Frontiers in Molecular Biosciences, vol. 9,‎ (ISSN 2296-889X, PMID 35685242, PMCID 9171138, DOI 10.3389/fmolb.2022.864874, lire en ligne, consulté le )
  5. (en) Suresh Banjara, Chathura D. Suraweera, Mark G. Hinds et Marc Kvansakul, « The Bcl-2 Family: Ancient Origins, Conserved Structures, and Divergent Mechanisms », Biomolecules, vol. 10, no 1,‎ , p. 128 (ISSN 2218-273X, PMID 31940915, PMCID 7022251, DOI 10.3390/biom10010128, lire en ligne, consulté le )
  6. (en) Marc Kvansakul, Sofia Caria et Mark Hinds, « The Bcl-2 Family in Host-Virus Interactions », Viruses, vol. 9, no 10,‎ , p. 290 (ISSN 1999-4915, PMID 28984827, PMCID 5691641, DOI 10.3390/v9100290, lire en ligne, consulté le )
  7. (en) Yoshihide Tsujimoto, Lawrence R. Finger, Jorge Yunis et Peter C. Nowell, « Cloning of the Chromosome Breakpoint of Neoplastic B Cells with the t(14;18) Chromosome Translocation », Science, vol. 226, no 4678,‎ , p. 1097–1099 (ISSN 0036-8075 et 1095-9203, DOI 10.1126/science.6093263, lire en ligne, consulté le )
  8. Barrans, S. L. et al. The t(14;18) is associated with germinal center-derived diffuse large B-cell lymphoma and is a strong predictor of outcome. Clin. Cancer Res. 9, 2133–2139 (2003)
  9. (en) David L. Vaux, Suzanne Cory et Jerry M. Adams, « Bcl-2 gene promotes haemopoietic cell survival and cooperates with c-myc to immortalize pre-B cells », Nature, vol. 335, no 6189,‎ , p. 440–442 (ISSN 1476-4687, DOI 10.1038/335440a0, lire en ligne, consulté le )
  10. (en) Zoltán N. Oltval, Curt L. Milliman et Stanley J. Korsmeyer, « Bcl-2 heterodimerizes in vivo with a conserved homolog, Bax, that accelerates programed cell death », Cell, vol. 74, no 4,‎ , p. 609–619 (DOI 10.1016/0092-8674(93)90509-O, lire en ligne, consulté le )
  11. (en) K Wang, X M Yin, D T Chao et C L Milliman, « BID: a novel BH3 domain-only death agonist. », Genes & Development, vol. 10, no 22,‎ , p. 2859–2869 (ISSN 0890-9369 et 1549-5477, DOI 10.1101/gad.10.22.2859, lire en ligne, consulté le )
  12. Boyd, J. M. et al. Bik, a novel death-inducing protein shares a distinct sequence motif with Bcl-2 family proteins and interacts with viral and cellular survival-promoting proteins. Oncogene 11, 1921–1928 (1995).
  13. (en) Jie Yang, Xuesong Liu, Kapil Bhalla et Caryn Naekyung Kim, « Prevention of Apoptosis by Bcl-2: Release of Cytochrome c from Mitochondria Blocked », Science, vol. 275, no 5303,‎ , p. 1129–1132 (ISSN 0036-8075 et 1095-9203, DOI 10.1126/science.275.5303.1129, lire en ligne, consulté le )
  14. (en) Ruth M. Kluck, Ella Bossy-Wetzel, Douglas R. Green et Donald D. Newmeyer, « The Release of Cytochrome c from Mitochondria: A Primary Site for Bcl-2 Regulation of Apoptosis », Science, vol. 275, no 5303,‎ , p. 1132–1136 (ISSN 0036-8075 et 1095-9203, DOI 10.1126/science.275.5303.1132, lire en ligne, consulté le )
  15. (en) Lawrence H. Boise, Maribel González-García, Christina E. Postema et Liyun Ding, « bcl-x, a bcl-2-related gene that functions as a dominant regulator of apoptotic cell death », Cell, vol. 74, no 4,‎ , p. 597–608 (DOI 10.1016/0092-8674(93)90508-N, lire en ligne, consulté le )
  16. (en) E Y Lin, A Orlofsky, M S Berger et M B Prystowsky, « Characterization of A1, a novel hemopoietic-specific early-response gene with sequence similarity to bcl-2 . », The Journal of Immunology, vol. 151, no 4,‎ , p. 1979–1988 (ISSN 0022-1767 et 1550-6606, DOI 10.4049/jimmunol.151.4.1979, lire en ligne, consulté le )
  17. Gibson, L. et al. bcl-w, a novel member of the bcl-2 family, promotes cell survival. Oncogene 13, 665–675 (1996).
  18. (en) Ning Ke, Adam Godzik et John C. Reed, « Bcl-B, a Novel Bcl-2 Family Member That Differentially Binds and Regulates Bax and Bak », Journal of Biological Chemistry, vol. 276, no 16,‎ , p. 12481–12484 (DOI 10.1074/jbc.C000871200, lire en ligne, consulté le )
  19. (en) Ping Zhou, Liping Qian, Karen M. Kozopas et Ruth W. Craig, « Mcl-1, a Bcl-2 Family Member, Delays the Death of Hematopoietic Cells Under a Variety of Apoptosis-Inducing Conditions », Blood, vol. 89, no 2,‎ , p. 630–643 (ISSN 1528-0020 et 0006-4971, DOI 10.1182/blood.V89.2.630, lire en ligne, consulté le )
  20. Andrew M. Petros, Edward T. Olejniczak et Stephen W. Fesik, « Structural biology of the Bcl-2 family of proteins », Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular Cell Research, bcl-2 family members: integrators of survival and death signals in physiology and pathology, vol. 1644, no 2,‎ , p. 83–94 (ISSN 0167-4889, DOI 10.1016/j.bbamcr.2003.08.012, lire en ligne, consulté le )
  21. a et b (en) Chloe F. A. Warren, Michelle W. Wong-Brown et Nikola A. Bowden, « BCL-2 family isoforms in apoptosis and cancer », Cell Death & Disease, vol. 10, no 3,‎ , p. 177 (ISSN 2041-4889, PMID 30792387, PMCID 6384907, DOI 10.1038/s41419-019-1407-6, lire en ligne, consulté le )
  22. (en) Dang Nguyen, Elizabeth Osterlund, Justin Kale et David W. Andrews, « The C-terminal sequences of Bcl-2 family proteins mediate interactions that regulate cell death », Biochemical Journal, vol. 481, no 14,‎ , p. 903–922 (ISSN 0264-6021 et 1470-8728, PMID 38985308, PMCID 11346437, DOI 10.1042/BCJ20210352, lire en ligne, consulté le )
  23. (en) Cleta D'Sa-Eipper et G. Chinnadurai, « Functional dissection of Bfl-1, a Bcl-2 homolog: anti-apoptosis, oncogene-cooperation and cell proliferation activities », Oncogene, vol. 16, no 24,‎ , p. 3105–3114 (ISSN 1476-5594, DOI 10.1038/sj.onc.1201851, lire en ligne, consulté le )
  24. (en) Jordan L. Morris, Germain Gillet, Julien Prudent et Nikolay Popgeorgiev, « Bcl-2 Family of Proteins in the Control of Mitochondrial Calcium Signalling: An Old Chap with New Roles », International Journal of Molecular Sciences, vol. 22, no 7,‎ , p. 3730 (ISSN 1422-0067, PMID 33918511, PMCID 8038216, DOI 10.3390/ijms22073730, lire en ligne, consulté le )
  25. a et b Nada Dhaouadi, Veronica Angela Maria Vitto, Paolo Pinton et Lorenzo Galluzzi, « Ca2+ signaling and cell death », Cell Calcium, vol. 113,‎ , p. 102759 (ISSN 0143-4160, DOI 10.1016/j.ceca.2023.102759, lire en ligne, consulté le )
  26. (en) György Csordás, David Weaver et György Hajnóczky, « Endoplasmic Reticulum–Mitochondrial Contactology: Structure and Signaling Functions », Trends in Cell Biology, vol. 28, no 7,‎ , p. 523–540 (PMID 29588129, PMCID 6005738, DOI 10.1016/j.tcb.2018.02.009, lire en ligne, consulté le )
  27. (en) Jens Loncke, Allen Kaasik, Ilya Bezprozvanny et Jan B. Parys, « Balancing ER-Mitochondrial Ca2+ Fluxes in Health and Disease », Trends in Cell Biology, vol. 31, no 7,‎ , p. 598–612 (DOI 10.1016/j.tcb.2021.02.003, lire en ligne, consulté le )
  28. (en) Rui Chen, Ignacio Valencia, Fei Zhong et Karen S. McColl, « Bcl-2 functionally interacts with inositol 1,4,5-trisphosphate receptors to regulate calcium release from the ER in response to inositol 1,4,5-trisphosphate », The Journal of Cell Biology, vol. 166, no 2,‎ , p. 193–203 (ISSN 1540-8140 et 0021-9525, PMID 15263017, PMCID 2172311, DOI 10.1083/jcb.200309146, lire en ligne, consulté le )
  29. Yi-Ping Rong, Geert Bultynck, Ademuyiwa S. Aromolaran et Fei Zhong, « The BH4 domain of Bcl-2 inhibits ER calcium release and apoptosis by binding the regulatory and coupling domain of the IP3 receptor », Proceedings of the National Academy of Sciences, vol. 106, no 34,‎ , p. 14397–14402 (PMID 19706527, PMCID 2728114, DOI 10.1073/pnas.0907555106, lire en ligne, consulté le )
  30. (en) Sophia X. Tang, Christina M. Camara, Joy A. Franco et Maria F. Pazyra-Murphy, « Dissecting the neuroprotective interaction between the BH4 domain of BCL-w and the IP3 receptor », Cell Chemical Biology, vol. 31, no 10,‎ , p. 1815–1826.e5 (PMID 39067448, PMCID 11490406, DOI 10.1016/j.chembiol.2024.06.016, lire en ligne, consulté le )
  31. (en) Tim Vervliet, Elke Decrock, Jordi Molgó et Vincenzo Sorrentino, « Bcl-2 binds to and inhibits ryanodine receptors », Journal of Cell Science,‎ (ISSN 1477-9137 et 0021-9533, DOI 10.1242/jcs.150011, lire en ligne, consulté le )
  32. (en) M. Vogler, « BCL2A1: the underdog in the BCL2 family », Cell Death & Differentiation, vol. 19, no 1,‎ , p. 67–74 (ISSN 1476-5403, PMID 22075983, PMCID 3252829, DOI 10.1038/cdd.2011.158, lire en ligne, consulté le )
  33. (en) Lina Happo, Andreas Strasser et Suzanne Cory, « BH3-only proteins in apoptosis at a glance », Journal of Cell Science, vol. 125, no 5,‎ , p. 1081–1087 (ISSN 1477-9137 et 0021-9533, PMID 22492984, PMCID 3324577, DOI 10.1242/jcs.090514, lire en ligne, consulté le )
  34. (en) J. Zhang et P. A. Ney, « Role of BNIP3 and NIX in cell death, autophagy, and mitophagy », Cell Death & Differentiation, vol. 16, no 7,‎ , p. 939–946 (ISSN 1476-5403, PMID 19229244, PMCID 2768230, DOI 10.1038/cdd.2009.16, lire en ligne, consulté le )
  35. (en) Gilles J. P. Rautureau, Catherine L. Day et Mark G. Hinds, « Intrinsically Disordered Proteins in Bcl-2 Regulated Apoptosis », International Journal of Molecular Sciences, vol. 11, no 4,‎ , p. 1808–1824 (ISSN 1422-0067, PMID 20480043, PMCID 2871139, DOI 10.3390/ijms11041808, lire en ligne, consulté le )
  36. (en) Yong Yao, Andrey A. Bobkov, Leigh A. Plesniak et Francesca M. Marassi, « Mapping the Interaction of Pro-Apoptotic tBID with Pro-Survival BCL-XL », Biochemistry, vol. 48, no 36,‎ , p. 8704–8711 (ISSN 0006-2960 et 1520-4995, PMID 19670908, PMCID 2762941, DOI 10.1021/bi901171n, lire en ligne, consulté le )
  37. (en) L. P. Billen, A. Shamas-Din et D. W. Andrews, « Bid: a Bax-like BH3 protein », Oncogene, vol. 27, no 1,‎ , S93–S104 (ISSN 1476-5594, DOI 10.1038/onc.2009.47, lire en ligne, consulté le )
  38. a b et c Aisha Shamas-Din, Hetal Brahmbhatt, Brian Leber et David W. Andrews, « BH3-only proteins: Orchestrators of apoptosis », Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular Cell Research, mitochondria: The Deadly Organelle, vol. 1813, no 4,‎ , p. 508–520 (ISSN 0167-4889, DOI 10.1016/j.bbamcr.2010.11.024, lire en ligne, consulté le )
  39. (en) Michael Certo, Victoria Del Gaizo Moore, Mari Nishino et Guo Wei, « Mitochondria primed by death signals determine cellular addiction to antiapoptotic BCL-2 family members », Cancer Cell, vol. 9, no 5,‎ , p. 351–365 (DOI 10.1016/j.ccr.2006.03.027, lire en ligne, consulté le )
  40. (en) Evripidis Gavathiotis, Motoshi Suzuki, Marguerite L. Davis et Kenneth Pitter, « BAX activation is initiated at a novel interaction site », Nature, vol. 455, no 7216,‎ , p. 1076–1081 (ISSN 1476-4687, PMID 18948948, PMCID 2597110, DOI 10.1038/nature07396, lire en ligne, consulté le )
  41. (en) Elizaveta S. Leshchiner, Craig R. Braun, Gregory H. Bird et Loren D. Walensky, « Direct activation of full-length proapoptotic BAK », Proceedings of the National Academy of Sciences, vol. 110, no 11,‎ (ISSN 0027-8424 et 1091-6490, PMID 23404709, PMCID 3600461, DOI 10.1073/pnas.1214313110, lire en ligne, consulté le )
  42. (en) Anthony Letai, Michael C. Bassik, Loren D. Walensky et Mia D. Sorcinelli, « Distinct BH3 domains either sensitize or activate mitochondrial apoptosis, serving as prototype cancer therapeutics », Cancer Cell, vol. 2, no 3,‎ , p. 183–192 (DOI 10.1016/S1535-6108(02)00127-7, lire en ligne, consulté le )
  43. (en) Motoshi Suzuki, Richard J. Youle et Nico Tjandra, « Structure of Bax », Cell, vol. 103, no 4,‎ , p. 645–654 (DOI 10.1016/S0092-8674(00)00167-7, lire en ligne, consulté le )
  44. (en) Peter Vandenabeele, Geert Bultynck et Savvas N. Savvides, « Pore-forming proteins as drivers of membrane permeabilization in cell death pathways », Nature Reviews Molecular Cell Biology, vol. 24, no 5,‎ , p. 312–333 (ISSN 1471-0080, DOI 10.1038/s41580-022-00564-w, lire en ligne, consulté le )
  45. (en) « PNAS », sur PNAS (PMID 11248023, PMCID 30598, DOI 10.1073/pnas.041619798, consulté le )
  46. (en) Frank Edlich, Soojay Banerjee, Motoshi Suzuki et Megan M. Cleland, « Bcl-xL Retrotranslocates Bax from the Mitochondria into the Cytosol », Cell, vol. 145, no 1,‎ , p. 104–116 (PMID 21458670, PMCID 3070914, DOI 10.1016/j.cell.2011.02.034, lire en ligne, consulté le )
  47. (en) Franziska Todt, Zeynep Cakir, Frank Reichenbach et Frederic Emschermann, « Differential retrotranslocation of mitochondrial Bax and Bak », The EMBO Journal, vol. 34, no 1,‎ , p. 67–80 (ISSN 1460-2075, PMID 25378477, PMCID 4291481, DOI 10.15252/embj.201488806, lire en ligne, consulté le )
  48. (en) Rachel T Uren, Martin O’Hely, Sweta Iyer et Ray Bartolo, « Disordered clusters of Bak dimers rupture mitochondria during apoptosis », eLife, vol. 6,‎ (ISSN 2050-084X, DOI 10.7554/eLife.19944, lire en ligne, consulté le )
  49. (en) G Dewson, S Ma, P Frederick et C Hockings, « Bax dimerizes via a symmetric BH3:groove interface during apoptosis », Cell Death & Differentiation, vol. 19, no 4,‎ , p. 661–670 (ISSN 1350-9047 et 1476-5403, PMID 22015607, PMCID 3307980, DOI 10.1038/cdd.2011.138, lire en ligne, consulté le )
  50. (en) Lena Große, Christian A. Wurm, Christian Brüser et Daniel Neumann, « Bax assembles into large ring‐like structures remodeling the mitochondrial outer membrane in apoptosis », The EMBO Journal, vol. 35, no 4,‎ , p. 402–413 (ISSN 1460-2075, PMID 26783364, PMCID 4755111, DOI 10.15252/embj.201592789, lire en ligne, consulté le )
  51. (en) Sarah V. Schweighofer, Daniel C. Jans, Jan Keller-Findeisen et Anne Folmeg, « Endogenous BAX and BAK form mosaic rings of variable size and composition on apoptotic mitochondria », Cell Death & Differentiation, vol. 31, no 4,‎ , p. 469–478 (ISSN 1350-9047 et 1476-5403, PMID 38503846, PMCID 11043412, DOI 10.1038/s41418-024-01273-x, lire en ligne, consulté le )
  52. (en) Mariusz Karbowski, Yang-Ja Lee, Brigitte Gaume et Seon-Yong Jeong, « Spatial and temporal association of Bax with mitochondrial fission sites, Drp1, and Mfn2 during apoptosis », The Journal of Cell Biology, vol. 159, no 6,‎ , p. 931–938 (ISSN 1540-8140 et 0021-9525, PMID 12499352, PMCID 2173996, DOI 10.1083/jcb.200209124, lire en ligne, consulté le )
  53. (en) Julien Prudent, Rodolfo Zunino, Ayumu Sugiura et Sevan Mattie, « MAPL SUMOylation of Drp1 Stabilizes an ER/Mitochondrial Platform Required for Cell Death », Molecular Cell, vol. 59, no 6,‎ , p. 941–955 (DOI 10.1016/j.molcel.2015.08.001, lire en ligne, consulté le )
  54. (en) Jacqualyn J. Schulman, Forrest A. Wright, Xiaobing Han et Eric J. Zluhan, « The Stability and Expression Level of Bok Are Governed by Binding to Inositol 1,4,5-Trisphosphate Receptors », Journal of Biological Chemistry, vol. 291, no 22,‎ , p. 11820–11828 (DOI 10.1074/jbc.M115.711242, lire en ligne, consulté le )
  55. (en) Marcos A. Carpio, Robert E. Means, Allison L. Brill et Alva Sainz, « BOK controls apoptosis by Ca2+ transfer through ER-mitochondrial contact sites », Cell Reports, vol. 34, no 10,‎ , p. 108827 (PMID 33691099, PMCID 7995216, DOI 10.1016/j.celrep.2021.108827, lire en ligne, consulté le )

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Bibliographie

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